عزل وتشخيص المركبات الفينولية من نبات شوكة المسيح المزروع في العراق وتقييم تاثيرها الوراثي على نوعين من الخطوط السرطانية

المؤلفون

  • Z. O. Salman قسم علوم الحياة، كلية العلوم للبنات، جامعة بغداد، بغداد، العراق.
  • Bushra M.J. Alwash قسم علوم الحياة، كلية العلوم للبنات، جامعة بغداد، بغداد، العراق.
  • E. J. Kadhim فرع العقاقير والنباتات الطبية،كلية الصيدلة، جامعة بغداد، بغداد، العراق

DOI:

https://doi.org/10.21123/bsj.2024.9276

الملخص

يعتبر "تاج الأشواك" أو نبات شوكة المسيح، وهو من نباتات الزينة الطبية ، ينتمي إلى جنس يوفوربيا. E. milii يحتوي كميات وفيرة من المركبات الفينولية ، التربينات، الستيرويدات والقلويدات. كانت الأهداف الرئيسية لهذه الدراسة هي فحص مستخلصات الفلافونويد والنانو فلافونويد ضد نوعين من خطوط الخلايا السرطانية. تم تصنيع مركبات الفلافونويد النانوية عن طريق تفاعل مركب الكيتوسان والماليك اسد. تم تحليل مركبات الفلافونويد النانوية بواسطة مقياس الطيف الضوئي UV-sp -8001 بطول موجي 200-1000 نانومتر ، تم استخدام المجهر الإلكتروني (TEM) والمجهري الإلكتروني الماسح(SEM) لتحديد الخصائص المورفولوجية لمركبات الفلافونويد النانوية. يعتبر الفلافونويد والنانوفلافونويدعقار قوي ومتطور ضد خلايا سرطان الثدي (MCF-7) وخلايا سرطان البروستات(PC3) . تم فحص الفعالية المضادة للسرطان من مركبات الفلافونويد والنانوفلافونويد على خطين مختلفين من الخلايا السرطانية وكذلك خطوط الخلايا السليمة باستخدام اختبار MTT. تم استخدام تجزئة الحمض النووي وتقنية تلوين الخلايا بالصبغة المزدوجة AO / EtBr  لفحص علامات موت الخلايا المبرمج. لتحديد تشتت دورة الخلية ، تم استخدام قياس التدفق الخلوي ، وأظهرت النتائج  أن كميات الفلافونويد والنانوفلافونويد لها نشاطا ساما وفعالا ضد خطوط خلايا سرطان الثدي والبروستات. بالإضافة إلى ذلك ، تم ربط إيقاف دورة الخلية في مرحلة G0 / G1 بموت الخلايا المبرمج لخطوط الخلايا التي يسببها الفلافونويد والنانوفلافونويد. وفقًا لهذه النتائج ، تمنع مركبات الفلافونويد والنانوفلافونويد من تكاثر خطوط الخلايا السرطانية ، مما يؤدي إلى توقف دورة الخلية وتحفيز موت الخلايا المبرمج. تشير النتائج المتاحة إلى أن مركب الفلافونويد والنانوفلافونويد سيمثل نهجًا علاجيًا واعدًا لعلاج الخلايا السرطانية من الأنواع الأخرى.

المراجع

AL-Rawi A, Hassan F M, ALwash B M J. In Vitro Stiumlation of Ergosterol from Coelastrella Terrestris by Using Squalene and Studying Antioxidant Effect. Sys Rev Pharm. 2020; 11(11):1795-1803. http://dx.doi.org/10.31838/srp.2020.11.250 .

Salman Z O, ALwash B M J, Kadhim E J. Effect of Essential oil of Cestrum nocturnum Flowers Cultivated in iraq as antioxidant and elongation cold storeg peroid of mincid meat. Iraqi J Agric Sci.. 2019; 50(2): 601-607. https://doi.org/10.36103/ijas.v2i50.659 .

Chudasama K, Bhatt P, Chudasama K, Thaker V. Molecular marker study in ornamental plant Euphorbia milii. Int J Pharmacogn. 2018; 7(3) :882-8.

Hong L, Guo Z, Huang K, Wei S, Liu B, Meng S, et al. Ethnobotanical study on medicinal plants used by Maonan people in China. J Ethnobiol Ethnomed. 2015; 11(1): 32.

https://doi.org/10.1186/s13002-015-0019-1.

Kamurthy H, Dontha S, Rajani K. Phytochemical screening on Euphorbia milii red flowers-Isolation of terpenoids, flavone and phenols. J Ethnomed .2015; 2(6):322.

Saleem H, Zengin G, Locatelli M, Mollica A, Ahmad I, Mahomoodally FM, et al. In vitro biological propensities and chemical profiling of Euphorbia milii Des Moul (Euphorbiaceae): A novel source for bioactive agents. Ind Crops Prod . 2019; 130: 9-15. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2018.12.062 .

Devanaboyina N, Mounisha A, Bhavani B, Sireesha G, Kamari V, Reddy MR. Antimicrobial studies on flowers of Euphorbia Milii. Der Pharmacia Lettre. 2015; 3(7): 196-204.

Steck S E, and Murphy E A. Dietary patterns and cancer risk. Nat Rev Cancer 2020; 20: 125–138. https://dx.doi.org/10.1038/s41568-019-0227-4

Nardin S, Mora E, Varughese F M, D’Avanzo F, Vachanaram A R, et al. Breast Cancer Survivorship, Quality of Life, and Late Toxicities. Front Oncol. 2020; 10: 864. https://dx.doi.org/10.3389/fonc.2020.00864 .

Lee AV, Oesterreich S, Davidson NE. MCF-7 cells – Changing the course of breast cancer research and care for 45 years. J Natl Cancer Inst. 2015; 7: 107 pii: djv073. https://dx.doi.org/10.1093/jnci/djv073 .

Choi ES, Kim H, Kim HP, Choi Y, Goh SH. CD44v8-10 as a potential theranostic biomarker for targeting disseminated cancer cells in advanced gastric cancer. Sci Rep. 2017; 7: 4930. https://doi.org/10.1038/s41598-017-05247-7

Yonekura-Sakakibara K, Higashi Y, Nakabayashi R. The origin and evolution of plant flavonoid metabolism. Front Plant Sci. 2019; 10: 943. https://doi.org/10.3389/fpls.2019.00943 .

Wen W, Alseekh S, Fernie A R. Conservation and diversification of flavonoid metabolism in the plant kingdom. Curr Opin Plant Biol. 2020; 55: 100–108. https://dx.doi.org/10.1016/j.pbi.2020.04.004 .

Rauter A P, Ennis M, Hellwich K H, Herold B J, Horton D, Moss G P, et al. Nomenclature of flavonoids (IUPAC recommendations 2017). Pure Appl Chem. 2018; 90: 1429–1486. https://doi.org/10.1515/pac-2013-0919 .

Imran M, Rauf A, Abu-Izneid T, Nadeem M, Shariati M A, Khan, et al. Luteolin, a flavonoid, as an anticancer agent: A review. Biomed Pharmacother. 2019; 112: 108612. https://dx.doi.org/10.1016/j.biopha.2019.108612 .

Kew Science. Plants of the World Online". Plants of the World Online. Retrieved 26 February 2018. https://powo.science.kew.org

Stahl E. Thin layer chromatography hand book. United States of America: Library of Congress; 1999.174p.

Harborne J B.: Phytochemical Methods, A Guide to Modern Techniques of Plant Analysis.1st ed. London: Chapman and Hall; New York, 1991, 278p.

Wagner H, Bladt S.: Plant Drug Analysis: A Thin Layer Chromatography Atlas. 2nd ed. Springer-Velag, Berlin, 1996, 384p.

Kokate C K, Gokhale S B, Purohit A P. A Textbook of Pharmacognosy. 29th ed., Nirali Prakashan, 2009, 635p.

Kathiar S A, Kathiar S, ALwash B M. Efficiency evaluation of alcohol extract of Eriobotrya japonica on some biological aspects of Bemisia tabaci (Gennadius , 1889) and Aphis gossypii (Glover, 1877). IOP Conf Ser.: Earth Environ Sci. 2021; 779: 012120. https://dx.doi.org/10.1088/1755-1315/779/1/012120

Timotius D, Kusumastuti Y, Putri N R E. Proposed reaction mechanism of chitosan-graft-maleic from chitosan and maleic anhydride. IOP Conf Ser Mater Sci Eng. 2020; 722(1): 012078.‏ https://dx.doi.org/10.1088/1757-899X/722/1/012078.

Abdallah M A, Alwash M J, Ahmed S K H. Effect of crud and nano-steroidal extract Bacopa monnieri L. in embryonic development and average weight of hatching broiler chichs. Biochem Cell Arch. 2020; 20(2), 5155-5164. https://connectjournals.com/03896.2020.20.5155 .

Sulaiman G M, Waheeb H M, Jabir M S, Khazaal S H, Dewir Y H, Naidoo Y. Hesperidin loaded on gold nanoparticles as a drug delivery system for a successful biocompatible, anti-cancer, anti-inflammatory and phagocytosis inducer model. Sci Rep. 2020; 10 (1): 1-16. https://dx.doi.org/10.1038/s41598-020-66419-6 .

Hamad S F, Salman Z O. Alwash B M J. Assessment of antioxidant and cytotoxic activity of essential oil extracted from Lavandula angustifolia callus leaves. Iraqi J Agric Sci. 2021; 52(6): 1549-1554. https://doi.org/10.36103/ijas.v52i6.1496 .

ALwash B M. Triterpenoid Saponins Investigation and Pharmacological (Cytotoxic and Antioxidant) Properties of Bacopa monnieri L. Cultivated in Iraq. Baghdad Sci J. 2018; 15(2): 0123. https://doi.org/10.21123/bsj.2018.15.2.0123

Jabir M S, Nayef U M, Abdulkadhim W K, Sulaiman G M. Supermagnetic Fe3O4-PEG nanoparticles combined with NIR laser and alternating magnetic field as potent anti-cancer agent against human ovarian cancer cells. Mater Res Express. 2019; 6 (11): 115412. https://dx.doi.org/10.1088/2053-1591/ab50a .

Sulaiman G M. In vitro study of molecular structure and cytotoxicity effect of luteolin in the human colon carcinoma cells. Eur Food Res Technol. 2015; 241 (1): 83-90. https://doi.org/10.1007/s00217-015-2436-8 .

Al-Musawi S, Albukhaty S, Al-Karagoly H, Sulaiman G M, Jabir M S, Naderi-Manesh H. Dextran-coated superparamagnetic nanoparticles modified with folate for targeted drug delivery of camptothecin. Adv Nat Sci Nanosci. Nanotechnol. 2020; 11 (4): 045009. https://dx.doi.org/10.1088/2043-6254/abc75b .

Oh J W, Chun S C, Chandrasekaran M. Preparation and in vitro characterization of chitosan nanoparticles and their broad-spectrum antifungal action compared to antibacterial activities against phytopathogens of tomato. Agronomy.2019; 9(1): 21. https://doi.org/10.3390/agronomy9010021 .

Vaezifar S, Razavi S, Golozar M A, Karbasi S, Morshed M, Kamali M. Effects of some parameters on particle size distribution of chitosan nanoparticles prepared by ionic gelation method. J Clust Sci. 2013; 24(3): 891-903. ‏‏ https://dx.doi.org/10.1007/s10876-013-0583-2 .

Khasan k s, Jabir M S, Abdulameer F A. Preparation and characterization of copper oxide nanoparticles decorated carbon nanoparticles using laser ablation in liquid. J phy conf ser. 2018, 1003. https://dx.doi.org/10.1088/1742-6596/1003/1/012100 .

Mosmann, T. Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: Application to proliferation and cytotoxicity assays. J Immunol Methods 1983; 65: 55–63. https://dx.doi.org/10.1016/0022-1759(83)90303-4 .

Zhong Z, Chen X, Tan W, Xu Z, Zhou K, Wu T, Wang Y. Germacrone inhibits the proliferation of breast cancer cell lines by inducing cell cycle arrest and promoting apoptosis. Eur J Pharmacol. 2011, 667, 50–55. https://dx.doi.org/10.1016/j.ejphar.2011.03.041 .

Klosek G, Jaworsk D, Pietsz G, Szliszka G. Santin. (5,7-Dihydroxy-3,6,40 -Trimetoxy-Flavone) Enhances TRAIL-Mediated Apoptosis in Colon Cancer Cells. Life 2023;13: 592. https://dx.doi.org/10.3390/life13020592 .

Tavsan Z, Kayali H A. Flavonoids Showed Anticancer Effects on the Ovarian Cancer Cells: Involvement of Reactive Oxygen Species, Apoptosis, Cell Cycle and Invasion. Biomed Pharmacother. 2019; 116: 109004. https://dx.doi.org/10.1016/j.biopha.2019.109004 .

Park S, Lim W, Bazer F W, Song G. Naringenin Suppresses Growth of Human Placental Choriocarcinoma via Reactive Oxygen Species-Mediated P38 and JNK MAPK Pathways. Phytomedicine 2018; 50: 238–246. https://dx.doi.org/10.1016/j.phymed.2017.08.026 .

Salmani J M M, Zhang X P, Jacob J A, Chen B A. Apigenin’s Anticancer Properties and Molecular Mechanisms of Action: Recent Advances and Future Prospectives. Chin J Nat Med. 2017; 15: 321–329. https://dx.doi.org/10.1016/S1875-5364(17)30052-3 .

Alwash B M J. Cytotoxic And Antioxidant Activity Of Fruit Juice Of Eriobotrya Japonica (Thunb.) Lind Plant Culivated In Iraq. Iraqi J Agric Sci. 2017; 48 (3): 892-898. https://doi.org/10.36103/ijas.v48i3.402 .

Sliwka L, Wiktorska K, Suchocki P, Milczarek M, Mielczarek S, Lubelska K, et al. The comparison of MTT and CVS assays for the assessment of anticancer agent interactions. PLoS ONE 2016; 11: e0155772. https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0155772 .

Tiwari P, Mishra k P. Role of Plant-Derived Flavonoids in Cancer Treatment. Nutr cancer. 2023; 75(2): 430-449. https://dx.doi.org/10.1080/01635581.2022.2135744 .

Dobrzynska M, Napierala M. Florek,E. Flavonoid Nanoparticles: A Promising Approach for Cancer Therapy. Biomolecules. 2020; 10(9): 1268. https://dx.doi.org/10.3390/biom10091268 .

Natarajan T, Anandhi M, Aiswarya D, Ramkumar R, Kumar S, Perumal P. Idaein chloride induced p53 dependent apoptosis in cervical cancer cells through inhibition of viral oncoproteins. Biochimie 2016; 121: 13–20. https://dx.doi.org/10.1016/j.biochi.2015.11.008 .

Jeong S H, Kim H H, Ha S E, Park M Y, Bhosale P B, Abusaliya A, et al. Citation: Flavones: Six Selected Flavones and Their Related Signaling Pathways That Induce Apoptosis in Cancer. Int J Mol. Sci. 2022; 23: 965. https://dx.doi.org/10.3390/ijms231810965

Khan H, Ullah H, Martorell M, Valdes S E, Belwal T, Tejada S, et al. Flavonoids nanoparticles in cancer: Treatment, prevention and clinical prospects. Semin. Cancer Biol. 2019;57: 72–78. https://dx.doi.org/10.1016/j.semcancer.2019.07.023 .

Dhifair S F. Phytochemical Investigation of Pelargonium graveolens L. and Evaluation Their Antioxidant and Anticancer Activity. Master thesis. College of Science for Women, University of Baghdad. (2023). https://doi.org/10.30526/36.3.3105

Bhattacharyya A, Chattopadhyay R, Mitra S, Crowe S E. Oxidative stress: An essential factor in the pathogenesis of gastrointestinal mucosal diseases. Physiol Rev. 2014; 94: 329–354. https://dx.doi.org/10.1152/physrev.00040.2012 .

Salmman I S, Gali M A, Yaseen N Y. The Effect of Silybum marianum L. aquatic crude extracts on the cancer cell lines and normal cell line in vitro. Baghdad Sci J. 2011; 8(1): 324-333. https://doi.org/10.21123/bsj.2011.8.1.324-333

التنزيلات

إصدار

القسم

article

كيفية الاقتباس

1.
عزل وتشخيص المركبات الفينولية من نبات شوكة المسيح المزروع في العراق وتقييم تاثيرها الوراثي على نوعين من الخطوط السرطانية . Baghdad Sci.J [انترنت]. [وثق 18 مايو، 2024];21(9). موجود في: https://www.bsj.uobaghdad.edu.iq/index.php/BSJ/article/view/9276